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更新时间:2026-01-07
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ELISA试剂盒实验中会遇到很多问题
ELISA实验确实容易遇到各种小状况,别担心,我来帮你梳理常见问题和解决方法:
一、背景颜色深/非特异性染色
原因:洗涤不充分、试剂污染、孵育时间过长或抗体浓度过高。
解决方法:确保洗涤液注满微孔且无残留,重复洗涤2-3次;更换吸头避免交叉污染;严格按说明书控制孵育和显色时间;稀释抗体至推荐浓度,避光保存底物。
二、所有孔均无明显颜色
原因:试剂混淆、酶标物失活或步骤遗漏。
解决方法:检查试剂标签,确认无遗漏步骤;使用新鲜蒸馏水配制缓冲液,确保试剂室温平衡30分钟;更换酶标物或试剂盒(若过期或储存不当)。
三、假阳性,背景高甚至花板
原因:加样时污染、加酶时污染、温育箱温度过高、操作时间过长导致反应时间不同、洗液稀释倍数过高、洗板不充分、酶和显色液污染、显色后未及时终止反应。
解决方法:更换枪头避免污染,加酶时不要接触标本,注意吸头不要污染;控制温育箱温度在37±0.5℃;在尽可能短的时间内完成操作,避免堆积板子;按照要求稀释洗液,并延长浸泡时间,确保洗板次数;使用清洁的容器,避免污染;显色完成后立即终止反应。

四、重复性不好
原因:加样量不一、操作时间不一致、操作人员不同、标本处理不同。
解决方法:确保加样量与时间一致,使用同一名操作人员,模拟相同的反应条件;标本保证一致,无污染;注意移液器的校准。
五、标准曲线不佳
原因:倍比标准品时未充分混匀;标准品溶液配置有误或标准品已降解;样本中无检测物或检测物含量极低;样本中其他物质影响/掩盖检测;样本中检测物浓度过高,Hook效应导致假低值。
解决方法:使用校准过的移液器,快速、等量分配标准品;确认稀释正确,并按推荐方式保存和处理标准品;对样本进行适当稀释,降低其他物质的干扰;适当倍数稀释样本,使检测物浓度在试剂盒检测范围内。
六、阴性对照孔与空白孔的OD值偏高
原因:血清标本中存在非特异性抗体或蛋白质引起的。
解决方法:优化样本处理,避免使用溶血、高血脂样本;确保洗涤充分,避免试剂污染。
七、阳性对照不显色
原因:漏加阳性对照、阳性对照孔忘加酶或忘加显色剂、阳性对照受污染。
解决方法:检查试剂标签,确认无遗漏步骤;更换阳性对照或试剂盒(若过期或储存不当)。
八、整板不显色
原因:试剂和保存不当、已经失活、忘记加酶、忘记加抗原或中和试剂、忘记加显色剂A或显色剂B。
解决方法:检查试剂标签,确认无遗漏步骤;使用新鲜蒸馏水配制缓冲液,确保试剂室温平衡30分钟;更换酶标物或试剂盒(若过期或储存不当)。
九、阳性对照读数不正常
原因:加入标本后未进行必要的混匀、标本稀释错误、加样量不正确、冷冻标本未溶解混匀、标本中含有防腐剂。
解决方法:确保标本充分混匀,避免使用含防腐剂的标本;校准移液器,确保加样量准确
注:以上仅供参考,不作为实验依据,具体请联系品牌或技术老师!
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